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不同水解時(shí)間的Protamex酶對(duì)玉米谷蛋白表面張力、泡沫、理化性質(zhì)等的影響(一)

來源:食品科學(xué) 瀏覽 625 次 發(fā)布時(shí)間:2025-07-03

摘要:采用Protamex酶對(duì)玉米谷蛋白進(jìn)行水解,研究不同水解時(shí)間對(duì)玉米谷蛋白的泡沫性質(zhì)、表面張力、理化性質(zhì)、拉曼光譜及靜態(tài)流變學(xué)性質(zhì)等的影響。結(jié)果表明,Protamex酶水解顯著改善玉米谷蛋白的溶解性和泡沫性質(zhì),在120 min水解物的起泡力最大,是原玉米谷蛋白的2.8倍左右,泡沫穩(wěn)定性表現(xiàn)良好。此時(shí)水解物的表面張力最低、表觀黏度最高,所形成泡沫的微觀形態(tài)細(xì)膩均勻、蛋白膜較厚。隨著水解時(shí)間延長,玉米谷蛋白水解物的平均粒徑持續(xù)減小、內(nèi)源熒光強(qiáng)度和表面疏水性逐漸增加,而表面凈電荷呈先減小后增加的變化趨勢。拉曼光譜分析結(jié)果表明適當(dāng)水解使α-螺旋含量減少、無規(guī)卷曲和β-轉(zhuǎn)角含量增高、酪氨酸殘基峰強(qiáng)比(I850/I830)增強(qiáng)、色氨酸殘基峰強(qiáng)比(I760)降低,但對(duì)β-折疊含量影響較??;長時(shí)間水解使無規(guī)卷曲含量顯著增加,酪氨酸殘基峰強(qiáng)比(I850/I830)降低。因此,通過限制性水解作用可改變玉米谷蛋白的結(jié)構(gòu)及界面性質(zhì)、改善其泡沫性質(zhì),提高玉米蛋白在食品領(lǐng)域中的潛在利用率。


2021年,全國玉米產(chǎn)量約27 255萬t,玉米加工副產(chǎn)物總量可達(dá)7 000萬t左右。玉米蛋白粉(corn gluten meal,CGM)是濕法生產(chǎn)玉米淀粉的主要副產(chǎn)物之一,其蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為55%~65%,是一種豐富的植物蛋白質(zhì)資源。玉米蛋白質(zhì)由68%醇溶蛋白、22%谷蛋白及少量白蛋白和球蛋白等組成,水溶性差,不適宜直接在食品行業(yè)中的應(yīng)用,而通常是作為飼料或直接廢棄。玉米谷蛋白主要由谷氨酰胺、亮氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸及結(jié)氨酸等氨基酸組成,酰胺基氨基酸比例較高,是天然表面活性劑的良好來源。但玉米谷蛋白是由大約20多種分子質(zhì)量在11~127 ku的不同蛋白質(zhì)亞基以二硫鍵為主要相互作用力而緊密連接的巨大、復(fù)雜的大分子蛋白質(zhì),且僅能溶于稀堿溶液。這導(dǎo)致其很難在食品體系中發(fā)揮起泡或乳化作用。因此,本研究希望通過適度修飾玉米谷蛋白結(jié)構(gòu),增強(qiáng)谷蛋白在氣/水界面吸附的能力,從而改善其起泡性質(zhì),拓寬玉米谷蛋白在蛋糕、啤酒、冰淇淋以及攪打稀奶油等制品中的應(yīng)用。


已有研究表明物理和化學(xué)方法能夠提高谷蛋白的功能性質(zhì)。Zhao Meng等發(fā)現(xiàn)通過堿熱處理大米谷蛋白可提升其起泡性及泡沫穩(wěn)定性;Wang Yang等采用低功率密度超聲法對(duì)CGM進(jìn)行改性發(fā)現(xiàn)CGM局部的氨基酸序列相互作用發(fā)生改變,此外,劉金玲和Wang Yaru等分別采用糖基化以及磷酸化等化學(xué)修飾法對(duì)玉米谷蛋白和大米谷蛋白樣品進(jìn)行改性,結(jié)果表明玉米谷蛋白和大米谷蛋白的功能性質(zhì)顯著提高。酶水解法也是蛋白質(zhì)改性的有效方法,具有反應(yīng)條件溫和、毒副作用小等優(yōu)點(diǎn),在食品蛋白質(zhì)深加工中應(yīng)用廣泛。Wang Yonghui等采用Alcalase酶水解CGM并與單寧酸復(fù)合,其混合物的起泡性及氣/水界面行為均顯著優(yōu)于玉米蛋白;Klost等則利用胰蛋白酶對(duì)豌豆分離蛋白進(jìn)行水解,發(fā)現(xiàn)水解可有效提高蛋白質(zhì)的溶解性、乳化性等功能性質(zhì)并且對(duì)豌豆分離蛋白的界面性質(zhì)也產(chǎn)生了積極的影響。但有報(bào)道稱過度水解會(huì)導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)遭到劇烈破壞反而使其功能性質(zhì)降低,由于過小的肽段會(huì)失去某些形成幾種功能特性所需的蛋白質(zhì)網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的能力,從而影響其功能性質(zhì)。因此,對(duì)玉米谷蛋白進(jìn)行適度的水解必不可少。Protamex是經(jīng)枯草芽孢桿菌發(fā)酵而制得,屬于內(nèi)切蛋白酶,具有廣泛的酶切位點(diǎn),使具有緊密空間結(jié)構(gòu)的大分子質(zhì)量玉米谷蛋白的肽鍵斷裂。


本研究在前期研究結(jié)果基礎(chǔ)上,采用Protamex酶解玉米谷蛋白,以不同酶解時(shí)間表示水解進(jìn)程,探討不同酶解時(shí)間條件下玉米谷蛋白的起泡性、泡沫微觀形態(tài)、表面張力、靜態(tài)流變學(xué)特性、粒徑分布及結(jié)構(gòu)性質(zhì)的變化情況,以期為蛋白酶適度修飾技術(shù)在玉米蛋白質(zhì)上的應(yīng)用提供一定的理論依據(jù),從而促進(jìn)玉米蛋白質(zhì)的高值化應(yīng)用。


1材料與方法


1.1材料與試劑


CGM購自黑龍江龍鳳玉米開發(fā)有限公司,蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為65%(以干基計(jì)算)。


Protamex酶(食品級(jí))丹麥諾維信公司;α-淀粉酶(食品級(jí))北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;8-苯胺-1-萘磺酸(8-(phenylamino)naphthylamine-1-sulfonic acid,ANS)美國Sigma公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。


1.2儀器與設(shè)備


T25高速分散機(jī)德國IKA公司;ZEN3700納米激光粒度電位測定儀、kinexusPro+高級(jí)旋轉(zhuǎn)流變儀英國Malvern公司;BX53F熒光顯微鏡日本奧林巴斯公司;U-2910紫外-可見分光光度計(jì)日本Hitachi公司;RF-6000熒光分光光度計(jì)日本島津公司;MacroRAM拉曼光譜儀堀場(中國)貿(mào)易有限公司。


1.3方法


1.3.1玉米谷蛋白的制備


先對(duì)CGM進(jìn)行去淀粉、去醇溶蛋白處理,再采用堿提酸沉法提取谷蛋白。去淀粉:CGM分散于pH 6.5水溶液中,料液比1∶10(g/mL),置于65℃恒溫水浴磁力攪拌器中,加入1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))的α-淀粉酶反應(yīng)2 h,滅酶15 min后于4 000 r/min離心15 min,所得沉淀用純水洗滌3次,晾干、粉碎。去醇溶蛋白:去淀粉后樣品分散于70%乙醇溶液中,料液比1∶10(g/mL),置于60℃水浴中抽提醇溶蛋白,2 h后于4 000 r/min離心15 min,重復(fù)抽提2次,將沉淀晾干、粉碎。提取谷蛋白:將預(yù)處理后樣品以料液比1∶10分散于0.1 mol/L NaOH溶液,置于60℃恒溫水浴磁力攪拌器中提取2 h,于4 000 r/min離心15 min;取上清液用HCl(4 mol/L)溶液調(diào)節(jié)pH值至等電點(diǎn),于4 000 r/min離心15 min,將沉淀用70%乙醇溶液和蒸餾水分別洗滌3次,并將pH值調(diào)回至7.0,將所得谷蛋白冷凍干燥、粉碎后過80目篩備用。


1.3.2 Protamex酶水解玉米谷蛋白


將1.3.1節(jié)所得玉米谷蛋白分散于蒸餾水中,底物質(zhì)量濃度5 g/100 mL,按酶與底物之比0.81%加入Protamex酶,在pH 7.0、60℃條件下進(jìn)行水解,期間以0.1 mol/L NaOH溶液維持pH值恒定,并采用pH-stat法測定水解度。水解反應(yīng)分別進(jìn)行10、30、60、120 min和150 min后,煮沸30 min滅酶,水解液于4 500 r/min離心15 min,所得上清液冷凍干燥后為水解物,待測。


1.3.3溶解性的測定


將2 mL離心管標(biāo)記、稱量記為m1,稱取樣品0.1 g置于離心管中,再向離心管中加入1 mL的蒸餾水,旋渦振蕩10 min,后10 000 r/min離心10 min,棄去上清液,將沉淀物于80℃干燥8 h,最后將帶有沉淀物的離心管稱量記為m2。按照式(1)計(jì)算:

1.3.4泡沫性質(zhì)的測定


樣品分散于蒸餾水中制成質(zhì)量濃度為1 g/100 mL的蛋白溶液。取20 mL樣品溶液放置于50 mL燒杯中,記錄初始高度(H0),以13 500 r/min高速間歇攪打2 min,立刻記錄此時(shí)泡沫高度H1,室溫下靜置30 min后的記錄泡沫高度H2。起泡性和泡沫穩(wěn)定性按照式(2)、(3)計(jì)算:


1.3.5泡沫宏觀和微觀形態(tài)觀察


按照1.3.4節(jié)方法將樣品溶液攪打起泡,用相機(jī)拍照記錄泡沫產(chǎn)生0、10、20 min和30 min的宏觀形態(tài)變化。同時(shí)取部分泡沫置于載玻片上,并于顯微鏡下觀察并記錄相應(yīng)的微觀形態(tài)變化。


1.3.6表面張力的測定


將樣品配制為質(zhì)量濃度1 g/100 mL的分散液,采用芬蘭Kibron公司生產(chǎn)的Delta-8全自動(dòng)高通量表面張力儀按照GB/T 27842—2011《化學(xué)品動(dòng)態(tài)表面張力的測定快速氣泡法》的方法測定其表面張力。


1.3.7粒徑及Zeta電位的測定


將樣品制為質(zhì)量濃度1 mg/mL分散液并過0.22μm水系膜,設(shè)置溫度為25℃,蛋白折射率1.46,吸收參數(shù)1.33,溶劑為水,采用馬爾文納米激光粒度電位測定儀進(jìn)行測定。


1.3.8內(nèi)源熒光光譜的測定


將樣品制為質(zhì)量濃度0.1 mg/mL的分散液,室溫下通過熒光分光光度計(jì)掃描其內(nèi)源熒光強(qiáng)度。設(shè)定激發(fā)波長為290 nm,發(fā)射波長范圍300~400 nm,狹縫寬度5 nm。


1.3.9表面疏水性的測定


將樣品溶解并稀釋至蛋白質(zhì)量濃度0.01~0.20 mg/mL之間。取5 mL樣品溶液加入25μL ANS試劑(濃度為8 mmol/L,溶于0.01 mol/L pH 7.0的磷酸鹽緩沖液)在室溫條件下反應(yīng)15 min。設(shè)定熒光分光光度計(jì)的激發(fā)波長為390 nm,發(fā)射波長為470 nm,狹縫5 nm,分別測定樣品的熒光強(qiáng)度(FI0)和樣品加入ANS試劑后的熒光強(qiáng)度(FI1),F(xiàn)I1和FI0的差值記為FI,以蛋白質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),F(xiàn)I為縱坐標(biāo)作圖,曲線初始斜率即為樣品的表面疏水性指數(shù)。


1.3.10拉曼光譜的測定


將樣品平鋪在載玻片上進(jìn)行拉曼光譜的測定,設(shè)置波長532 nm,掃描范圍400~2 000 cm-1,掃描10次,每個(gè)樣品3次累加,以苯丙氨酸(1 003±1)cm-1的譜峰強(qiáng)度作為歸一化因子并運(yùn)用LabSpec6軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理。


1.3.11靜態(tài)流變學(xué)的測定


樣品制為質(zhì)量濃度為10 mg/mL的分散液,將樣品分散液緩慢傾注于于高級(jí)旋轉(zhuǎn)流變儀的樣品臺(tái)上。設(shè)定剪切速率為0.1~100 s-1,測試夾具為60 mm的錐板。將表觀黏度與剪切速率按照式(4)的冪律方程進(jìn)行擬合:

式中:η為黏度/(Pa·s);K為黏稠系數(shù)/(Pa·sn);ε為剪切速率/s-1;n為流動(dòng)指數(shù)。


1.4數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析


每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)至少3次,結(jié)果用表示,采用SPSS Statistics 17.0軟件對(duì)結(jié)果進(jìn)行ANOVA差異顯著性分析,P<0.05,差異顯著,采用OriginPro 2019b軟件作圖。


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